Servicio de Citometría de Flujo y cell Sorting
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Servicio de Citometría de Flujo y cell Sorting |
| Lista de las personas encargadas | Paula Andrea Abadie CPA Principal CIBICI- CONICET Pilar María Crespo CPA Principal CIBICI-CONICET |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Citómetro de flujo BD FACSCanto II™ Fabricante: BD Biosciences Año de instalación 2008 Características técnicas: Dispone de un láser azul Coherent® Sapphire™ de estado sólido refrigerado por aire (488 nm y 20 mW de potencia), que permite detectar cuatro colores. Un laser rojo JDS Uniphase™ HeNe (633 nm y 17 mW), para dos colores. El número total de detectores es de 8 (6 detectores de fluorescencias y dos de parámetros morfológicos). El software para adquirir muestras y analizar es FACSDiva. Láser Azul 488 nm contiene 2 detectores para morfología celular Forward Scatter (FSC) y Side Scatter (SSC) y 2 filtros de, 530/30 (FITC); 585/42 (PE); 670 LP (Percp Cy5.5) y 780/60 nm (PE-Cy7). Láser Rojo 633 nm contiene 2 detectores 780/60 nm (APC-Cy7) y 660/20 nm (APC). Citómetro de flujo Attune Fabricante: Thermofisher Año de instalación 2015 El citómetro de flujo Attune NxT es un analizador celular avanzado en el que la fluídica de enfoque acústico es la clave tanto para una alta sensibilidad como para un alto rendimiento. Permite analizar 35.000 eventos/sec con una velocidad electrónica máxima de 65.000 eventos/sec. Cuenta con un autosampler que permite el procesamiento rápido de varias muestras mediante el análisis automático de muestras de placas de 96, 384 y pocillos profundos.. Tiene dos láseres que permiten la detección de 9 parámetros Laser Azul 488 nm :530/30 (FITC); 574/26 (PE); 695/40 (PerCP Cy5.5) y 780/60 PE-Cy7, más FSC y SSC Laser Rojo 637 nm : 670/14 (APC); 720/30 Alexa 700 y 780/60 APC-Cy7. Citometro de flujo Fortessa Fabricante: BD Biosciences Año de instalación 2017 Este equipo determina y cuantifica la fluorescencia de sondas fluorescentes unidas a diferentes partes tanto de células eucariotas como procariotas, orgánulos, proteínas. La fluorescencia emitida es recogida en distintos filtros acotados a una longitud de onda determinada. La cuantificación de la fluorescencia está asociada con el parámetro celular que se está midiendo, generando resultados cuantitativos como la intensidad de fluorescencia, porcentaje de poblaciones celulares, contaje del número de células/ML. Este equipo es capaz de determinar hasta 18 parámetros simultáneamente, incluidos tamaño y complejidad de las células. Posee 18 detectores distribuídos para ser excitados en cuatro canales (4 Láseres). Descripción: Citómetro de flujo analizador. El equipo consta de 4 láseres. La configuración de láseres y filtros es la siguiente: Láser Azul 488 nm contiene 2 detectores para morfología celular Forward Scatter (FSC) y Side Scatter (SSC) y 2 filtros de, 530/30 (FITC) y 670/30 (PerCP Cy5.5) para fluorescencia Láser Violeta 405 nm contiene 6 detectores 780/60 nm (BV 786); 710/50 nm ( BV711); 670/30 nm (BV650); 610/20 nm (BV605)); 525/50 nm (BV510) y 450/20 (BV421). Láser Rojo 640 nm contiene 3 detectores 780/60 nm (APC-Cy7); 730/45nm ( Alexa 700) y 670/30 nm (APC). Láser Amarillo/Verde 561nm contiene 5 detectores 780/60nm (PE-Cy7) ; 710/50nm (PE-Cy5.5); 670/30nm (PE-Cy5); 610/20 nm (PE-Texas Red) y 586/15 (PE). Cell Sorter FACS ARIA IIu Fabricante: BD Biosciences Año de instalación 2005 Características técnicas: Dispone de tres líneas láser: El diodo Coherent® Sapphire™ de estado sólido azul (488 nm y 13 mW de potencia), permite detectar cinco colores y láser rojo (633 nm y 11 mW JDS Uniphase™ HeNe refrigerado por aire), para dos colores. En total, puede detectar hasta 9 parámetros de dispersión al mismo tiempo (7 detectores de fluorescencias, Forward scatter (FSC) y Side scatter (SSC)), así como purificar hasta 4 tipos diferentes de poblaciones celulares simultáneamente en base a características determinadas. La velocidad de adquisición puede llegar hasta 70000 eventos por segundo. Admite diferentes soportes tanto para la adquisición como para la separación de muestras. Utiliza el software FACSDiva para la adquisición y análisis de muestras. Cinco detectores para el láser 488-nm (standard filters): 515–545 nm FITC 564–606 nm or 563–589 nm PE 600–620 nm PE-Texas Red® 675–715 nm or 665–685 nm PE-Cy™5 or PerCP or PI 750–810 nm PE-Cy™7 Dos detectores para el láser 633-nm: 650–670 nm APC 750–810 nm APC-Cy7 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | El Servicio de Citometría del CIBICI, creado en 2005, tiene entre sus funciones dar soporte científico-técnico sobre citometría de flujo, desarrollar y optimizar nuevas aplicaciones así como realizar separaciones celulares. La Citometría de flujo permite medir simultáneamente múltiples parámetros de cada una de las células o partículas (previamente marcadas con fluorocromos) dentro de una población heterogénea en suspensión a una velocidad de varios miles por segundo, permitiendo identificar diferentes subpoblaciones celulares, comportamientos fisiológicos, etc. Para ello las partículas en suspensión se hacen pasar mediante un sistema de flujo por un punto de análisis óptico consistente en una fuente de iluminación y excitación y un sistema de detectores que recogen la luz reflejada o emitida por cada una de las partículas. Los datos generados se almacenan para cada partícula individualmente y se analizan estadísticamente mediante software específico. Permite el análisis de todo aquello para lo que se disponga de reactivos fluorescentes: Análisis de poblaciones celulares. Inmunofenotipaje con anticuerpos frente a proteínas de membrana o intracelulares Expresión de proteínas fluorescentes Apoptosis (AnexinaV, tunel..) Ciclo celular (tinción de DNA, incorporación de BrdU, ciclinas) Proliferación celular Análisis de microorganismos Análisis simultáneo de presencia de diferentes proteínas solubles en sueros, etc. por técnicas de CBA multiplex. Separación celular. Además, la citometría de flujo permite aislar las células con alta precisión en términos de pureza, recuperación y viabilidad en función de los parámetros analizados y, por lo tanto, su posterior utilización en ensayos o análisis restringidos a poblaciones celulares específicas, o su utilización con fines experimentales (diferenciación, viabilidad, etc.), clínicos (como la terapia regenerativa) o biotecnológicos. |
| DATOS DE CONTACTO: | citometriacibici@gmail.com https://cibici.conicet.gov.ar/servicios-citometria/ |
Servicio de Citometría de Flujo y cell Sorting
Servicio de Microscopia
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Servicio de Microscopia |
| Lista de las personas encargadas | Dra. Pilar María Crespo CPA Principal CIBICI-CONICET |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Microscopio Nikon Eclipse TE-2000U. Marca Nikon Modelo Eclipse TE-200U, Año instalación: 2004 Microscopio invertido,equipado con cámara color, para trabajo en campo claro y fluorescencia (iluminación con lámpara de mercurio), filtros para fluorescencia para Violeta, Verde y Rojo Microscopio Leica DMI8 Marca leica Modelo: DMI8 Año instalación: 2015 Microscopio invertido, con platina motorizada, para trabajos en campo claro y fluorescencia, con óptica corregida a infinito (objetivos de 10x, 20x, y 63x secos, 100x inmersión en aceite). Sistema de iluminación de luz transmitida con iluminación LED, controladora CTR avanzada, iluminador de fluorescencia EL6000, cámara digital Leica DFC345 FX. Con software Leica LAS X CORE, S-CONTROL, SW Autofoco, adquisición multicanal (campo claro, violeta, verde, rojo y rojo lejano), time-lapse, 3D visualización básica y módulo de Mark and Find. Microscopio In Cell, Marca Cytiva (ex General Electric), ahora con el soporte de Molecular Devices. Modelo: IN Cell 2500HS Año instalación: 2019. Este es un microscopio de wide-field totalmente automatizado, que combinado con el análisis que realiza el software InCarta, permite a los usuarios en todos los niveles de experiencia realizar análisis potentes como parte de un análisis de alto contenido (HCA, High Content Analysis). Con óptica corregida a infinito (objetivos de 4x, 10x, 40x, y 60x), multichannel acquisition (campo claro, violeta, verde, rojo y rojo lejano), time-lapse, Z-scan, módulo de Liquid handling, spheroid finder, módulo de incubación con temperatura y CO2 para células vivas, adaptable a múltiples soportes (placas multiwell de cualquier tamaño, portaobjetos, cápsulas de petri de diferentes tamaños, labtek, etc) |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | La microscopía óptica es una herramienta sumamente útil para la obtención de imágenes de seccionamientos ópticos principalmente en muestras biológicas, ya sea fijadas o in vivo, para poder describir y analizar fenómenos de superficie celular o intracelulares, como así también para escribir interacciones intercelulares. Nuestros microscopios permiten la observación y adquisición de fotos a diferentes aumentos de muestras minerales o biológicas (vivas a fijadas), tanto en campo claro como fluorescencia. El software también permite la toma de filmaciones en el tiempo. |
| DATOS DE CONTACTO: | pilar.crespo@unc.edu.ar https://cibici.conicet.gov.ar/servicios-microscopia/ |
Servicio de Microscopia
7500 Real Time PCR System
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | 7500 Real Time PCR System |
| Lista de las personas encargadas | Ana Racca, Profesora Adjunta – UNC – Profesional Adjunta – CONICET Luciana Reyna, Profesora Asistente-UNC – Profesional Adjunta – CONICET |
| Descripción del Equipo/Facilidad | 7500 Real Time PCR System, Applied Biosystems. 2006 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Equipo de PCR a tiempo real con 5 canales. Formato de microplacas de 96 pocillos o tiras de microtubos. |
| DATOS DE CONTACTO: | biomol.cibici@gmail.com |
7500 Real Time PCR System
EC3 Imaging System
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | EC3 Imaging System |
| Lista de las personas encargadas | Luciana Reyna, Profesora Asistente – UNC, Profesional Adjunta – CONICET Nadia Olivero, Profesora Asistente – UNC |
| Descripción del Equipo/Facilidad | EC3 Imaging System, UVP |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Cuarto oscuro con Transiluminador UV/luz blanca y epiluminación blanca. Filtros para bromuro de etidio, SYBR Green, SYBR Gold y azul de coomasie. Registro de imágenes con OptiChemi 600 Camera. |
| DATOS DE CONTACTO: | biomol.cibici@gmail.com |
EC3 Imaging System
Glomax Multidetection System
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Glomax Multidetection System |
| Lista de las personas encargadas | Luciana Reyna, Profesora Asistente – UNC, Profesional Adjunta – CONICET |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Glomax Multidetection System, Promega. |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Lector de absorbancia, fluorescencia y luminiscencia en microplacas. |
| DATOS DE CONTACTO: | biomol.cibici@gmail.com |
Glomax Multidetection System
Nanodrop One
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Nanodrop One |
| Lista de las personas encargadas | Fabrizzio Morandini, Profesor Asistente – UNC, Becario – CONICET Luciana Reyna, Profesora Asistente – UNC, Profesional Adjunta – CONICET |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Nanodrop One. Thermofisher |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Espectrofotómetro UV-Vis para micromuestras. |
| DATOS DE CONTACTO: | biomol.cibici@gmail.com |
Nanodrop One
Odyssey CLx
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Odyssey CLx |
| Lista de las personas encargadas | Eliana Baigorri. Profesora Asistente – UNC, Becaria – CONICET Luciana Reyna, Profesora Asistente – UNC, Profesional Adjunta – CONICET |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Odyssey CLx – Licor |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Sistema de detección de radiación infrarroja. |
| DATOS DE CONTACTO: | biomol.cibici@gmail.com |
Odyssey CLx
Synergy HT
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Synergy HT |
| Lista de las personas encargadas | Lidwina Bertrand, Profesora Adjunta – UNC, Investigadora Asistente – CONICET Luciana Reyna, Profesora Asistente – UNC, Profesional Adjunta – CONICET |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Synergy HT – Biotek. 2012 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Lector de absorbancia, fluorescencia y luminiscencia en microplacas. |
| DATOS DE CONTACTO: | biomol.cibici@gmail.com |
Synergy HT
StepOnePlus Real-Time PCR System
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | StepOnePlus Real-Time PCR System |
| Lista de las personas encargadas | Luciana Reyna, Profesora Asistente – UNC, Profesional Adjunta – CONICET Ximena Volpini, Profesora Titular – UCC, Profesora Asistente – UNC, Becaria Postdoctoral – FonCyT |
| Descripción del Equipo/Facilidad | StepOnePlus Real-Time PCR System – Applied Biosystems. 2012 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Equipo de PCR a tiempo real con 4 colores LED. |
| DATOS DE CONTACTO: | biomol.cibici@gmail.com |
StepOnePlus Real-Time PCR System
Servicio de Histotecnología de CIBICI
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Servicio de Histotecnología de CIBICI: |
| Lista de las personas encargadas | Laura Gatica Profesional Principal CPA CONICET Soledad Miró Profesional Adjunto CPA CONICET |
| Descripción del Equipo/Facilidad | (1) PhenoImager Fusion: permite el escaneo y digitalización de imágenes de preparados histológicos en campo claro y fluorescencia; Proveedor: Akoya Biosciences, Año de Instalación: 2023; (2) Micrótomo de rotación manual: permite el seccionamiento de tacos de parafina obteniendo cortes de 3-5um para la aplicación de coloraciones o inmunotinciones; Thermo HM325 Proveedor: Thermo Scientific, Año de Instalación: 2019 (3) Criostatopermite el seccionamiento de tejido congelado obteniendo cortes de 5-10 um para la aplicación de inmunofluorescencia; Cryostat 0620E, Proveedor: Thermo Scientific Shandon, Año de Instalación: 2014 (4) Campana de extracción de gases de acero inoxidable: permite el trabajo seguro del personal técnico al manipular solventes con peligrosidad química empleados en los procedimientos del Servicio, Proveedor: Grigio SA, Año de Instalación: 2020 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | En el Servicio de Histotecnología se lleva a cabo el procesamiento de tejidos de animales de experimentación y humanos para su seccionamiento en criostato o micrótomo. Los cortes obtenidos son empleados para la realización de técnicas de coloraciones generales (Hematoxilina-Eosina, Giemsa) e histoquímicas (PAS-Hematoxilina, Tricrómico de Masson, Alcian Blue-Hematoxilina, Impregnación argéntica para fibras de Reticulina) y/o para la aplicación de inmunotinciones. Recientemente se incorporó al Servicio el escáner PhenoImager Fusion que permite obtener imágenes de la totalidad de los preparados histológicos en campo claro y en fluorescencia con alta precisión y velocidad. Desde el Servicio también se brinda entrenamiento a becarios que ingresan al Instituto a través de un curso virtual de Histotecnología disponible en la plataforma Moodle de la FCQ UNC que incluye 4 módulos que describen las instalaciones y procedimientos del Servicio con sus correspondientes evaluaciones. |
| DATOS DE CONTACTO: | histotecnologia.cibici@gmail.com |
Servicio de Histotecnología de CIBICI
Area Cultivo Celular
| Departamento Académico | Bioquímica Clínica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Area Cultivo Celular |
| Lista de las personas encargadas | Lic. Gabriela Furlan CPA-Adjunta, CIBICI-CONICET; Dra. Noelia M. Maldonado CPA-Adjunta, CIBICI-CONICET; Farm. Alejandra Romero |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Las salas para cultivos no infectados son dos y cuentan con: -4 incubadoras de CO2 Marcas: Sanyo y Thermo scientific. Modelos: (2) MCO-15AC, Heracell 150i, steri cycle i160. -4 cabinas de bioseguridad nivel 2 (BSCII) 1 flujo laminar. Marcas: (4) ESCO, (1) MICROFILTER. Modelos: MFU-2FD3, ESCO AC2-6E8; AC2 6S1 (2011), AC2 4S1(2009), AC23S8 (2022). -2 Microscopios invertidos Marca: Nikon, Carl Zeiss Modelo: Eclipse TS 100, Axiovert 25C. -3 Termo de nitrogeno liquido Marca: CBS, AIR LIQUID, STATEBOURNE. Modelo: CRYOSYSTEM 4001, ARPEGE 70 (2017), BIORACK 2400 -1 Autoclave Marca: Thermo Scientific Modelo: Varioklav Las salas para cultivos infectados cuenta con: -2 incubadoras de CO2 Marcas: Sanyo Modelos: MCO-17AC, MCO-15AC. -4 cabinas de bioseguridad nivel 2 (BSCII) Marcas: (2)Labconco, Heal Force ,ESCO. Modelos: Labconco logic+ (2020), purifier class II, AC2 451 (2020), AC2-6S8 (2020), -2 centrifugas de bioseguridad Marcas: Thermo Scientific Modelos: Sorvall ST 16R Año de instalación: 2018, 2020. -1 Microscopio invertido Marca: Nikon Modelo: Eclipse TS 2 (2019) |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | El Laboratorio de Cultivo Celular (LCC) del CIBICI está destinado a facilitar los recursos necesarios para el manejo de líneas celulares y cultivos primarios. |
| DATOS DE CONTACTO: | cultivo.cibici@gmail.com; https://cibici.conicet.gov.ar/servicios-cultivo/ |
Area Cultivo Celular
Equipos de Análisis Térmico: Calorímetro diferencial de barrido y termogravimetro
| Departamento Académico | Ciencias Farmacéuticas |
| Nombre del Equipo/Instalación | Equipos de Análisis Térmico: CALORÍMETRO DIFERENCIAL DE BARRIDO y TERMOGRAVIMETRO |
| Lista de las personas encargadas | Norma Maggia, CPA CONICET |
| Descripción del Equipo/Facilidad | CALORÍMETRO DIFERENCIAL DE BARRIDO y TERMOGRAVIMETRO, Marca TA Instruments, Modelo Discovery. Año de instalación: 2016. |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | El LAT UNITEFA cuenta con equipos de la línea Discovery, TA Instruments. – Equipo de Calorimetría Diferencial de Barrido (DSC): permite realizar ensayos en modo estándar y Modulado (MDSC). Se dispone de un sistema de enfriamiento refrigerado (RCS90) que permite al equipo operar desde -90ºC hasta 500°C. Se emplean cápsulas de aluminio de 40 y 100 uL, de tecnología TZero herméticas o estándar. Se dispone de una microbalanza de 0,1 ug. Todos los ensayos pueden realizarse bajo atmósfera de nitrógeno. – Equipo para análisis Termogravimétrico (TGA): capacidad de trabajo desde temperatura ambiente hasta 1200 ºC, con una exactitud de 1ºC y una precisión de 0.1ºC. Permite hacer diferentes tipos de ensayos entre los que se destacan TGA en modo estándar, HiRes, TGA Modulado. Todos los ensayos pueden realizarse bajo atmósfera de nitrógeno. |
| DATOS DE CONTACTO: | https://unitefa.conicet.unc.edu.ar/solicitud-turnos-equipamiento/ |
Equipos de Análisis Térmico: Calorímetro diferencial de barrido y termogravimetro
Bioterio – Farmacología
| Departamento Académico | Farmacología Otto Orshinger |
| Nombre del Equipo/Instalación | Bioterio – Farmacología |
| Lista de las personas encargadas | Yanina Altamirano (Nodocente), Nicolás Jaime (Nodocente), Javier Reparaz (Personal de Apoyo) |
| Descripción del Equipo/Facilidad | En este bioterio, que se encuentra funcionando desde el año 2020, se producen y mantienen ratas de la cepa Wistar (Rattus norvegicus, modelo animal) que luego son utilizadas en diversos procedimientos experimentales (investigación) y/o en actividades de docencia. Se encuentra equipado con salas destinadas a la reproducción y cría de los animales (maternidad, stock, tratamiento) y a la evaluación de comportamiento (siete salas de conducta). Cuenta además con un módulo para la realización de cirugías, el cual incluye una sala de preparación (precirugía), una sala de cirugía propiamente dicha y una sala de recuperación (post-cirugía). Además, se cuenta con salas para experimentos de autoadministración de drogas (condicionamiento operante), el cual incluye una sala de experimentación con 10 cajas de Skinner (Med Associates Inc.), una sala de cirugía y otra sala de mantenimiento de los animales bajo tratamiento. También cuenta con un sector destinado a la cría y experimentación con ratones (Mus musculus). Este módulo está conformado por cuatro salas con equipamiento y sistema de extracción independiente. Por último, el bioterio cuenta con un amplia área de lavado, una sala de depósito de materiales y una oficina exclusiva para bioteristas, además de vestuarios ubicados previo al ingreso del bioterio. Estas instalaciones se encuentran adheridas al Sistema Nacional de Bioterio (SNB). Las prácticas con animales se realizan bajo un programa de bienestar animal (Res HCD: 98/2018; FCQ-UNC) y el personal está capacitado y acreditado para el cuidado, mantenimiento y experimentación. Cada protocolo experimental y/o procedimiento que involucre el uso de animales es previamente aprobado por el CICUAL-FCQ. |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Producción, Investigación, Docencia, Servicios a terceros. |
| DATOS DE CONTACTO: | bioterioifec@gmail.com – https://ifec.fcq.unc.edu.ar/ |
Bioterio – Farmacología
Microscopio SPM Keysight 5500 (AFM-STM)
| Departamento Académico | Físicoquímica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Microscopio SPM Keysight 5500 (AFM-STM) |
| Lista de las personas encargadas | Omar Linarez Pérez, responsable. Fernando Cometto, responsable. Lucrecia Carot, técnica |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Microscopio SPM, Keysight (ex Agilent), 5500, 2013 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Las imágenes que se obtienen por las técnicas SPM representan una descripción morfológica del sustrato analizado. El área mínima es de 0.5 µm2 para el caso de la técnica AFM y de 10 nm2 para el caso de STM (resolución atómica). El equipo se encuentra adherido al Sistema Nacional de Microscopía y cuenta con STAN de CONICET para facturación de servicios. |
| DATOS DE CONTACTO: | olinarez@unc.edu.ar, fernando.cometto@unc.edu.ar, lucre.carot@unc.edu.ar |
Microscopio SPM Keysight 5500 (AFM-STM)
Pinzas ópticas
| Departamento Académico | Química Biológica Ranwell Caputto |
| Nombre del Equipo/Instalación | Pinzas ópticas |
| Lista de las personas encargadas | Natalia Wilke. Profesora Titular, Investigadora Principal |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Equipo de pinzas ópticas de fabricación casera, implementado en el año 2010 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | El equipo está acoplado a un microscopio de fluorescencia (Axiovert 200) en el CEMINCO. Está adherido al SNM |
| DATOS DE CONTACTO: | natalia.wilke@unc.edu.ar https://www.argentina.gob.ar/ciencia/sistemasnacionales/microscopia |
Pinzas ópticas
Espectrofotómetro de fluorescencia Cary Eclipse
| Departamento Académico | Química Orgánica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Espectrofotómetro de fluorescencia Cary Eclipse |
| Lista de las personas encargadas | Alicia Veglia, Profesora Titular, Investigadora Principal; Natalia Pacioni, Profesora Adjunta, Investigadora Independiente |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Espectrofotómetro de fluorescencia, Agilent, Cary Eclipse, 2016 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Fluorescencia-Fosforescencia- Bio/quimioluminiscecnia- Fosforescencia resuelta en el tiempo- Matrices Em/Ex. |
| DATOS DE CONTACTO: | n.lpacioni@unc.edu.ar |
Espectrofotómetro de fluorescencia Cary Eclipse
Cromatógrafo líquido de alta eficacia (HPLC) semipreparativo
| Departamento Académico | Química Orgánica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Cromatógrafo líquido de alta eficacia (HPLC) semipreparativo |
| Lista de las personas encargadas | M. Teresa Baumgartner, Profesora Asociada, Investigadora Principal; Liliana Jimenez, Profesora Asistente, Investigadora Adjunta |
| Descripción del Equipo/Facilidad | HPLC, ThermoScientific, ultimate 3000, 2013 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Cromatografía líquida semipreparativa |
| DATOS DE CONTACTO: | ljimenez@unc.edu.ar |
Cromatógrafo líquido de alta eficacia (HPLC) semipreparativo
Microscopio Infrarrojo
| Departamento Académico | Química Orgánica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Microscopio Infrarrojo |
| Lista de las personas encargadas | Marisa Martinelli |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Microscopio FT-IR Nicolet iN10 con detector de alta resolución MCT |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Análisis estructural de materiales poliméricos naturales y sintéticos/fármacos/moléculas orgánicas/muestras arqueológicas, entre otras. Análisis superficial/estudio de modificación superficial. Mapeo de muestras |
| DATOS DE CONTACTO: | marisa.martinelli@unc.edu.ar |
Microscopio Infrarrojo
Physica MCR 301- Anton Paar (Alemania)
| Departamento Académico | Química Orgánica |
| Nombre del Equipo/Instalación | Physica MCR 301- Anton Paar (Alemania) |
| Lista de las personas encargadas | Cesar G. Gomez, Prof. Adj. (DS) |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Reometro Physica MCR 301, Anton Paar, Physica MCR 301, 2007 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Investigación – Servicios |
| DATOS DE CONTACTO: | Dr. Cesar G. Gomez (cesar.gomez@unc.edu.ar) |
Physica MCR 301- Anton Paar (Alemania)
Cluster de Computo
| Departamento Académico | Química Teórica y Computacional |
| Nombre del Equipo/Instalación | Cluster de Computo |
| Lista de las personas encargadas | Mariscal Marcelo Investigador German Soldano Investigador |
| Descripción del Equipo/Facilidad | Cluster de computo – 2019 |
| Aplicaciones del Equipo/Instalación | Calculo |